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口腔拭子基因组DNA提取试剂盒(离心吸附柱法)图片
产品货号:
WH0017
中文名称:
口腔拭子基因组DNA提取试剂盒(离心吸附柱法)
英文名称:
Extraction kit for genomic DNA from oral swab
产品规格:
50次|200次
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价
本试剂盒提供一种简单稳定的方法,在90min内分离纯化得到基因组DNA。试剂盒采用可以特异性结合DNA的离心吸附柱和独特的缓冲液系统,可以稳定高效的纯化得到口腔拭子样本的基因组DNA。使用本试剂盒得到的DNA可提供基因检测或者组织分型足够用的DNA,满足后续实验的要求。使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作,包括酶切、PCR、文库构建、Southern杂交等实验。

产品特点:
·采用硅胶膜原理,简单、快速从口腔拭子中提取基因组DNA。
·提取的基因组DNA片段大、纯度高。
·单个拭子样本得率达到0.5-3.5μg。

试剂盒组成:
组分50T200T
缓冲液GA30ml2×50 ml
缓冲液GB30ml2×50 ml
缓冲液GD13 ml52 ml
漂洗液PW15 ml50 ml
洗脱缓冲液TB15 ml30ml
Proteinase K1 ml4×1 ml
RNase-Free吸附柱CR250个200个
收集管(2 ml)50个200个
离心管(1.5 ml)50个200个

保存条件:室温(15-25℃)干燥条件下,可保存12个月,更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下,若溶液产生沉淀,使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间,必要时可在37℃水浴中预热10 min,以溶解沉淀。

选配试剂:RNase A(100mg/ml)(目录号:WH0217);Carrier RNA(目录号:RT416)

注意事项:(请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项)
1.若缓冲液GA或GB中有沉淀,可在37℃水浴中重新溶解,摇匀后使用。
2.所有离心步骤均使用台式离心机,室温下离心。

使用方法:
使用前请先在缓冲液GD和漂洗液PW中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶上的标签。
取样方式:使用棉签在面颊内擦拭10次。
注意:为了保证样本不被食物或者饮料污染,取样前30 min内请勿进食和饮水。

1.处理材料:
  将在面颊内擦拭过的棉签转置于2 ml离心管中,用剪刀将棉签部分从其杆上剪下,加入400μl缓冲液GA。
  注意:如果需要去除RNA,可加入4 μl RNase A(100mg/ml)溶液(客户自备,目录号:WH0217),振荡15 sec,室温放置5 min。
2.加入20 μl Proteinase K溶液,涡旋10 sec混匀,56℃放置60 min,其间每15 min涡旋混匀数次。
3.加入400μl缓冲液GB,充分颠倒混匀,70℃放置10 min。此时溶液应变清亮,简短离心以去除管盖内壁的液滴,然后挤压去除拭子,将尽可能多的裂解液转移至新的离心管中。
  注意1:加入缓冲液GB时可能会产生白色沉淀,一般70℃放置时会消失,不会影响后续实验。如溶液未变清亮,说明细胞裂解不彻底,可能导致提取DNA量少和提取出的DNA不纯。
  注意2:如果由于拭子上细胞数少导致提取的基因组DNA少于1μg,可以在添加缓冲液GB的同时添加Carrier RNA(客户自备,目录号:RT416)。
4.加200 μl无水乙醇,充分颠倒混匀,简短离心以去除管盖内壁的液滴。
  注意:加入无水乙醇后可能会出现絮状沉淀,但不影响DNA提取。
5.将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱CR2中(吸附柱CR2放入收集管中),12000rpm (~13400×g)离心30 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CR2放回收集管中。
6.向吸附柱CR2中加入500 μl缓冲液GD(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12000rpm(~13400×g)离心30 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CR2放回收集管中。
7.向吸附柱CR2中加入600 μl漂洗液PW(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12000rpm(~13400×g)离心30 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CR2放回收集管。
8.重复操作步骤7。
9.12000rpm (~13400×g)离心2 min,倒掉废液。将吸附柱CR2室温放置数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。
  注意:这一步的目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验。
10.将吸附柱CR2转入一个干净的离心管中,向吸附膜中间位置悬空滴加20-50 μl洗脱缓冲液TB,室温放置2-5 min,12000rpm (~13400×g)离心2 min。
  注意:洗脱缓冲液体积不应少于20 μl,体积过小影响回收效率。为增加基因组DNA的得率,可将离心得到的溶液再加入吸附柱CR2中,室温放置2 min,12000rpm(~13400×g)离心2 min。洗脱液的pH对于洗脱效率有很大影响。若用ddH2O做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5范围内,pH值低于7.0会降低洗脱效率;且DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。

DNA浓度及纯度检测:
1.得到的基因组DNA片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。
2.DNA应在OD260处有显著吸收峰,OD260值为1相当于大约50 μg/ml双链DNA、40 μg/ml单链DNA。
3.OD260/OD280比值应为1.7-1.9,如果洗脱时不使用洗脱缓冲液,而使用ddH2O,比值会偏低,因为pH值和离子存在会影响光吸收值,但并不表示纯度低。
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